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关于大肠菌群论文范文 试述食品中大肠菌群检测和技巧相关论文写作参考文献

分类:硕士论文 原创主题:大肠菌群论文 更新时间:2024-02-09

试述食品中大肠菌群检测和技巧是关于大肠菌群方面的论文题目、论文提纲、大肠菌群论文开题报告、文献综述、参考文献的相关大学硕士和本科毕业论文。

摘 要:大肠菌群是评价食品卫生质量的重要指标之一.检测结果其定义为:需氧及兼性厌氧、在37℃能分解乳糖产酸产气的革兰氏染色阴性无芽孢杆菌.本文阐述了两个标准版本的大肠菌群检测中的检测步骤、方法对比及染色镜检技巧.

关键词:大肠菌群 检测 技巧

大肠菌群的测定,在实际工作中存在不同检测方法.GB/T4289.3-2003、GB4789.3-

2016版都是现行有效的两个版本的检验标准.尽管方法各异,但乳糖发酵却是这些不同方法中的共同点.

一、大肠菌群检测

1、培养基准备:培养基 GB/T4789.03—2003:乳糖胆盐发酵培养基,伊红美兰琼脂,乳糖复发酵培养基.GB 4789.03—2016:月桂基硫酸盐胰蛋白胨肉汤(LST),煌绿胆盐肉汤(BGLB).仪器超净工作台、生化培养箱、显微镜.

2.实验原理和方法

2.1检验步骤

依据GB/T4789.3—2003(食品卫生微生物学检验大肠菌群测定,检验主要有以下步骤:

(1)接种:以无菌操作取均匀后检样25 mL(g)放于含有 225 mL灭菌生理盐水的灭菌三角烧瓶中,经充分振摇做成1:l0的均匀稀释样液.根据食品卫生标准要求和对样品污染情况的判断,选择3个稀释度,每个稀释度接种3管,放置36℃±l℃的生化培养箱内培养24±2h.

(2)平板分离:将产气的发酵管分别划线在伊红美蓝琼脂平板上,置36℃±l℃的生化培养箱内培养24±2h.

(3)染色和证实:观察菌落形态,并做革兰氏染色镜检.革兰氏染色阴性的无芽胞杆菌的试管接种乳糖发酵管,置于36℃±1℃的生化培养箱内培养24±2h.

(4)结果报告:凡是乳糖管产气、革兰氏染色阴性的无芽胞杆菌,判定该管为大肠菌群阳性.根据大肠菌群阳性的管数,查 MPN检索表,乘以稀释倍数,报告每100 mL(g)样品中大肠菌群的MPN值.

2.2测试步骤

依据GB 4789.3—2016 (食品安全国家标准微生物学检验大肠菌群测定》,测试主要有以下步骤:(1)接种:以无菌操作取均匀后检样25 mL(g)放入盛有225mL灭菌磷酸盐缓冲液或生理盐水的无菌均质杯中,经充分振摇做成1:10的均匀稀释样液.根据食品卫生标准要求和对样品污染情况的判断,根据污染情况判断,依次制成十倍递增系列稀释样品匀液,选择3个稀释度,每个稀释度接种3管LST,放置 36±1℃的生化培养箱内培养24±2h.(2)证实:将产气的发酵管挑取一环菌液接种BGLB管,放置36±l℃的生化培养箱内培养48±2h.(3)结果报告:根据大肠菌群阳性的管数,查MPN检索表,乘以稀释倍数,报告每l mL(g)样品中大肠菌群的MPN值.在MPN检索表第一栏阳性管数下面列出的mL(g),系指原样品(包括液体和固体)的mL(g)数,并非样品稀释后的mL(g)数,对固体样品理应注意固体样品的接种量.

样品1 g经10倍稀释后,虽加入1 mL 量,但其实际其中只含有0.1 g样品,故应按0.1 g记,不应按 1 mL记.接种第一梯度1g×3的样量是10倍稀释液的10mL.

二、2003版与2016版的大肠菌群检测新方法对比

2003版大肠菌群检验步骤检验采用三步(即乳糖发酵试验、分离培养和证实试验).在食品检验上,除个别情况外,一般来说,如果平板上有较多典型大肠菌群菌落,革兰氏染色为阴性杆菌,即可做出判定.如平板上典型菌落甚少或均不够典型,则应多挑菌落做证实试验,以免出现假阴性.只作一步初发酵,对某些食品来说,误差是比较大的.这样做,会有相当部分的合格样品被作为不合格样品处理,应予注意.

2016版大肠菌群检测新方法与国际接轨,检验新技术进入国标行列,它釆用了LST一BGLB进行发酵培养.接种LST肉汤初发酵培养,如产酸、产气将培养物转种于BGLB肉汤培养,根据其阳性管数查阅MPN检索表即可做到到检测结果.2003版大肠菌群检测方法为经典方法,类似实验中仲裁法;2016版方法简便易行便于初学者(企业出厂检验人员)操作.类似实验中的快速测定,省时省力可提高速度与效率.在实际工作的检测中比对,两种方法并存结果不存在明显差异.

三、大肠菌群实验技巧

革兰氏染色镜检依据GB/T4789.3—2003标准.

典型菌落挑选→革兰氏染色镜检

3.1菌落挑选:在EMB平板上挑选典型菌落进行镜检

大肠杆菌菌落呈黑紫色有光泽或无光泽时,检出率最高;红色、粉红色菌落检出率较低.

挑取菌落数与大肠杆菌的检出率密切相关.

3.2革兰氏染色镜检

实际操作步骤技巧关键点在脱色.

(1)涂片:均匀而薄.

(2)固定:火焰固定时温度适宜,把涂片在酒精灯火焰上方、左右或以旋转方式快速通过,将涂片触碰手握拳头时虎口处,以不炽热为度,过热则镜检时菌体变形,不利于观察及判定.

(3)初染:滴加结晶染液1分钟完成,倾斜用细水流冲洗待干.

(4)媒染:滴加碘液媒染,水洗.

(5)脱色:掌握脱色度是染色成败的关键,G-菌细胞壁含有较多被乙醇溶解的类脂质,而且肽聚糖质较薄,交联度低,用95%的乙醇脱色溶解了类脂质增加细胞通透性,使被染的结晶紫和碘复合物易于渗出,结果G-菌脱去初染的紫色,复染上蕃花花红的颜色,所以菌体呈红色.在实际操作中薄而均匀的涂片上滴加95%的乙醇约20至30秒,流出液体无色时终止脱色,否则脱色过度会造成G+误判为G-菌.

(6)沙黄复染液(番红花红)复染.

(7)冲洗:玻片倾斜,用稳定的细流冲洗.

(8)涂片宜挑取培养18~24h菌落,老龄化的G-菌呈G+菌,工作中注意避免出现假阳性和假阴性.

(9)镜检用10 ×100 油镜进行镜检,香柏油与载玻片的折射率相近,滴加香柏油会使通透性增加,在镜检中可观察到清晰的物象.在载玻片所要观察部位滴上一滴香柏油,换上油镜,小心调节粗准焦螺旋,使油镜慢慢下降或慢慢上升载合物台,从侧面观察油镜下端与标本之间的距离,当油镜下端开始触及油滴时即可停止.从目镜观察,用手调节粗准焦螺旋,即可观察到清晰的标本物像.

参考文献

[1]中华人民共和国国家标准GB 4789.3-2016《食品安全國家标准食品微生物学检验大肠菌群计数》.

[2]《食品微生物检测工作指南》中国标准出版社 2012年.

总结:本文关于大肠菌群论文范文,可以做为相关论文参考文献,与写作提纲思路参考。

参考文献:

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